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HepG2细胞培养方法

来源:九壹网


HepG2细胞培养方法

细胞复苏:

材料:HepG2细胞、RPMI-10、胎牛血清、PS(青霉素+链霉素)

35cm细胞培养瓶、消毒的罗口离心管、消毒的吸管、水浴箱、计时器、离心机、光学显微镜

试剂配制:

100ml完全培养基:90mlRPMI-10 + 10ml胎牛血清+1支PS,4℃保存

步骤:

1. 罗口离心管加入含10%胎牛血清的完全培养基3ml.。

2. 从液氮罐中取出细胞冻存管,迅速置37℃水浴1min至融化。

3. 打开冻存管,吸取细胞悬液至离心管,轻轻混匀。

4. 800rpm离心5min,弃上清。

5. 细胞沉淀中加入4ml完全培养基,转入35cm培养瓶37℃常规培养,第二天观察细胞生长情况。

细胞传代与换液:

材料:RPMI-10、小牛血清、胎牛血清、0.25%胰蛋白酶、PBS、PS、

35cm细胞培养瓶、消毒的罗口离心管、消毒的吸管、水浴箱、计时器、离心机、光学显微镜

试剂配制:

100ml终止液:90mlRPMI-10 + 10ml小牛血清+1支PS,4℃保存

步骤:

1. 对数增长期汇合度80%-90%的细胞可以传代,4ml PBS清洗两次。

2. 加入0.25%胰酶1ml,37℃孵育5min。

3. 加入3ml终止液,吹打细胞使其脱落并单个化,再移至罗口离心管。

4. 离心5min,800rpm,弃上清。

5. 罗口离心管加入完全培养基,混匀后分瓶培养。

6. 细胞隔日可以用PBS清洗后更换培养基。

细胞冻存:

材料:RPMI-10、小牛血清、胎牛血清、0.25%胰蛋白酶、二甲基亚砜(DMSO)、PBS、PS、35cm细胞培养瓶、消毒的罗口离心管、消毒的吸管、消毒的冻存管、水浴箱、计时器、离心机、过滤器、光学显微镜

试剂的配制:

10ml冻存液:7ml完全培养基+2ml胎牛血清+1ml DMSO,混匀后过滤,4℃保存

步骤:

1. 去除培养瓶中旧的培养基,加入4ml PBS清洗两次。

2. 混匀胰酶,每瓶加入1ml,37℃孵育5min。

3. 每瓶加入3ml终止液,反复抽打细胞使其脱落并单个化,移至罗口离心管。

4. 800rpm离心5min,弃上清。

5. 每管加入1ml冻存液,混匀细胞,移至冻存管中。将细胞冻存管放于-20℃保存2hrs。

6. 细胞冻存管-80℃过夜。

7. 第二天转入液氮中保存。

细胞种板:

材料:RPMI-10、小牛血清、胎牛血清、0.25%胰蛋白酶、PBS、PS、

35cm细胞培养瓶、六孔板、消毒的罗口离心管、消毒的吸管、水浴箱、计时器、离心机、光学显微镜、细胞计数器

步骤:

1. 将汇合度为80%-90%的HepG2细胞加入4ml PBS清洗两次。

2. 加入1ml已混匀好的胰酶消化,37℃孵育5min。

3. 培养瓶中加入终止液3ml,反复吹打使其脱落并单个化,细胞悬液转移至罗口。

4. 800rpm离心5min,弃上清。

5. 加入6.5ml完全培养基,充分混匀细胞,取15ul细胞悬液进行细胞计数,要求六孔板约5*106 -1*106 /孔。

6. 将6ml细胞悬液转入六孔板,每孔1ml,轻轻摇匀悬液,使其均匀完全覆盖,37℃继续培养。

软脂酸和炎症因子处理HepG2细胞:

材料:RPMI-10、胎牛血清、0.25%胰蛋白酶、甲醇、PBS、PS、

软脂酸(SIGMA P9767)、TNF-a、BSA

消毒的罗口离心管、消毒的吸管和EP管、过滤器、光学显微镜、测量计、过滤器

试剂配制:

1. BSA培养液:

储存液:称取1g BSA溶于10ml RPMI-10,混匀后过滤,4℃保存

工作液:一瓶RPMI-10加入2mlBSA储存液和一支PS,即浓度为0.2%,4℃保存

2. 软脂酸储存液:称取13.92mg软脂酸(分子量278.41)溶于1ml甲醇,即浓度为0.05mmol/ml,37℃水浴助溶,分为5份分装于EP管,-20℃保存

3. TNF-a储存液:称取10ngTNF-a溶解于1mlPBS,及浓度为10ng/ml,分为10份分装于EP管,-20℃保存

步骤:

1. 低倍显微镜观察六孔板里细胞状态,保证无污染,无杂质,汇合度为70%-80%的细胞才可以进行下一步实验。

2. 六孔板里的细胞加入1mlPBS清洗,每孔加入1ml 0.2% BSA的RPMI-10,继续无血清培养24hrs。

3. 不同浓度软脂酸处理细胞24hrs。(每组三个复孔)

(1) 对照组:用1mlPBS清洗后, 每孔1ml BSA继续培养。

(2) 0.02mmol/L palmitate: 1.2ul 软脂酸储存液+2998.8ul BSA,每孔1ml。

(3) 0.04mmol/L palmitate: 2.4ul 软脂酸储存液+2997.6ul BSA,每孔1ml。

(4) 0.08mmol/L palmitate: 4.8ul 软脂酸储存液+2995.2ul BSA,每孔1ml。

(5) 0.16mmol/L palmitate: 9.6ul 软脂酸储存液+2990.4ul BSA,每孔1ml。

(6) 0.32mmol/L palmitate: 19.2ul 软脂酸储存液+2980.8ul BSA,每孔1ml。

4. 不同浓度TNF-a处理细胞24hrs。(每组三个复孔)

(7) 对照组: 每孔1ml BSA继续培养。

(8) 5ng/ml TNF-a: 1.5ul TNF-a储存液+2998.5ul BSA,每孔1ml。

(9) 10ng/ml TNF-a: 3ul TNF-a储存液+2997ul BSA,每孔1ml。

(10) 20ng/ml TNF-a: 6ul TNF-a储存液+2994ul BSA,每孔1ml。

(11) 40ng/ml TNF-a: 12ul TNF-a储存液+2988ul BSA,每孔1ml。

Trizol法提取细胞总RNA流程

材料:

1. RNAiso Reagent: 购于Taraka(货号:D312),100ml

2. 氯仿、异丙醇、无水乙醇:国产分析纯

3. 0.1%DEPC-H2O、PBS、75%乙醇

4. DEPC处理的EP管、滴头、50ml离心管,5ml注射器、计算器、低温离心机、冰盒

材料的去RNA酶化:

1. 0.1%DEPC水 配好的DEPC水过夜灭活,高压蒸汽灭菌,

2. EP管、滴头、离心管用0.1%DEPC水浸泡过夜,高压蒸汽灭菌,

3. 75%乙醇:75ml无水乙醇+25ml 0.1%DEPC水。

4. 新购买的异丙醇分装于DEPC处理的50ml离心管,4℃保存

步骤:

1. 吸出培养基,PBS清洗一次;

2. 向100ml培养瓶(6孔板中2孔)加入1ml RNAiso Reagent,水平放置片刻,

使裂解液均匀分布于细胞表面并裂解细胞,然后使用移液吹打细胞使其脱落(约30次);将裂解液转移至1.5ml EP管,移液器反复吹打(推荐用5ml注射器抽打10次);

3. 室温静置5min后加入氯仿200ul(RNAiso Reagent:氯仿=1ml:200ul),用力震荡后,室温静置5min,待分层后离心,12000g,4℃,15min;

4. 取80%无色上清液至另一干净1.5ml EP管(切忌吸出白色中间层),加入400ul异丙醇(异丙醇应与上清体积比为1:1),充分混匀后,静置10min;

5. 12000g,4℃,离心10min,此时管底可见沉淀;

6. 小心弃上清液,缓慢沿管壁加入75%乙醇1ml,轻轻上下颠倒使沉淀飘起,12000g,

4℃,离心5min,小心弃乙醇,可离心数秒后将残液吸走;

7. 室温静置2-5min,干燥RNA;

8. 加入DEPC-H2O 30或40ul溶解RNA,-80℃保存。

RNA浓度的标化:

吸取4ul RNA+196ul DEPC水稀释50倍在分光光度计上测算样品的浓度,记好A260、Con(ug/ml)和A260/A280,原始浓度为测量浓度*50(A260和Con换算为Con:A260=40, A260/A280为1.6-2.0,线性范围最好),标化的方法是以最低浓度的一个样品为标准进行标化,标化10ulRNA,计算各个样品加DEPC水量,做RT时RNA加样量为X(0.5ug/原始浓度*1000)ul。

RT-PCR

材料:逆转录试剂盒(TAKARA DRR047A)、PCR试剂盒(TAKARA DRR081A)

PCR水(灭菌蒸馏水)、去RNA酶的200ul离心管、PCR 8连管、计时器、水浴箱

逆转录反应体系为20ul

(1) 基因组DNA的除去反应。

5*g DNA Eraser Buffer 2ul

g DNA Eraser 1ul

RNase Free dH2O (10-2-1-X)ul

Total RNA Xul

42℃ 2min 水浴,4℃保存

(2) 反转录反应。

5*PrimeScript Buffer2 4ul

PrimerScript RT Enzyme MIX 1 1ul

RT Primer MIX 4 1ul

RNase Free d H2O 4ul

37℃ 15min→→85℃ 5sec (PCR仪反应,约16min,迅速转入-20℃保存)

PCR反应体系为25ul

SYBR Premix EX Taq Ⅱ 12.5ul

上游引物 0.25ul

下游引物 0.25ul

PCR水 10ul

c DNA 2ul

*无论做RT还是PCR应先将按样品数计算每种试剂加入量,配在一管里面混匀后加入每个反应管里面,再加各个管的RNA或c DNA,为了保证每管加量完全,可以多配1-2样品的试剂量,混匀加入每管。

*考虑到做PCR时检测具体基因数不同,反应体系可以以倍数的改变,如P两个基因,RT时可以做6ul体系,即每个试剂加入量均*0.3,混匀后加入每管。

*加入RT后cDNA2ul,注意加样量一致,改好盖子,在盖子一端的边缘做好标记,弹去反应液里面的空气,离心。

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